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點擊次數(shù):3076 發(fā)布時間:2023/8/4 15:13:01
免疫沉淀(IP)是一種可以純化和富集目標(biāo)蛋白的沉淀技術(shù),在蛋白質(zhì)組學(xué)研究中可用于識別蛋白質(zhì)與蛋白質(zhì)之間的相互作用。免疫沉淀是一種重要的技術(shù),用于研究蛋白質(zhì)之間的存在、相對豐度、大小、上調(diào)或下調(diào)、穩(wěn)定性、翻譯后修飾(PTMs)以及相互作用。以下為免疫沉淀實驗常見問題及解決方案,希望對大家的實驗有幫助。
一、背景高
1.樣本中有不溶蛋白殘留,離心后應(yīng)立即取出上清。
2.洗滌不充分,優(yōu)化洗滌緩沖液,通過向洗滌緩沖液中加入去垢劑(0.5-1%NP-40/Triton X-100/Tween-20)、增加鹽離子濃度(如250mM NaCl/1-2mM DTT/β-ME),增加洗滌時間和次數(shù)來提高洗雜效率。
3.有非特異蛋白和磁珠結(jié)合,磁珠用BSA預(yù)封閉不充分,確保BSA新鮮,將磁珠和1%BSA 孵育1小時,使用PBS洗滌3-4次。
4.抗體特異性不好,使用親和純化,特異性好的抗體。
5.抗體用量太多導(dǎo)致非特異結(jié)合,嘗試使用更少的抗體。
6.裂解液中蛋白含量太高,導(dǎo)致洗滌液有很多假陽性蛋白,減少樣本用量。
7.蛋白和抗體非特異結(jié)合,可以在免疫沉淀之預(yù)先將磁珠和樣本孵育,清理樣本中可以和磁珠結(jié)合的成分,一些研究人員也使用同型對照來預(yù)清理裂解液。
8.樣本中目的蛋白降解,樣本裂解時嚴(yán)格低溫操作,加入過量蛋白酶抑制劑。
9.高強度洗脫緩沖液(如SDS-PAGE上樣緩沖液)將導(dǎo)致多種非特異蛋白和抗原一起洗脫,溫和的緩沖液(如0.1M甘氨酸,pH2.5)可防止此類污染。
二、大量抗體被洗脫
抗體用量太高,嘗試減少抗體用量。
三、沒有檢測到目的蛋白洗脫
1.樣本中目的蛋白不表達或低水平表達,如果表達水平低,需要增加裂解液用量,但也可能導(dǎo)致非特異結(jié)合的增加,所以在免疫沉淀之需要預(yù)先清除裂解液。
2.抗體用量不夠,檢查抗體用量,提高使用量。
3.目標(biāo)蛋白沒有從磁珠上洗脫,需要確保使用的洗脫緩沖液正確。
4.抗體沒有結(jié)合磁珠,確保使用的磁珠和抗體亞型匹配,磁珠正確保存,防止變質(zhì)或干燥。
5.裂解液中鹽堿度太高,需要改用低鹽堿度裂解液。一般可選NP-40,RIPA, western及IP細胞裂解液。
四、加樣順序?qū)Π械鞍椎寐实挠绊?br />
磁珠、抗體、抗原樣本混合一起孵育,速度快,但靶蛋白純度和得率會很低。
間接法是抗體和抗原樣本先結(jié)合,再加入磁珠孵育,靶蛋白得率高,直接法是磁珠先和抗體結(jié)合,再加入抗原孵育,對于表達豐度高的蛋白,兩種方法差別不大,如果表達豐度低,要選擇間接法獲得更高的靶蛋白得率。
五、抗原洗脫方法的選擇
2.酸性洗脫法:如果要對洗脫后蛋白進行功能分析,則用酸性洗脫法,0.1M-0.15甘氨酸(pH2.5-3)是非常快捷有效的非變性洗脫液。
3.競爭洗脫法:如果靶蛋白帶有標(biāo)簽,可用高濃度標(biāo)簽或配體進行競爭性洗脫,洗脫后樣本具有生物活性,且沒有抗原片段污染。
陰性對照:如用同型對照作為陰性對照,來排除非特異結(jié)合的情況。
七、二抗如何選擇
IP捕獲抗體 | WB檢測一抗 | WB檢測二抗 | 備注 |
小鼠來源 | 小鼠來源 | HRP-protein A 或HRP-抗小鼠IgG | WB一抗若為mouse lgG1/lgG3亞型,HRP-標(biāo)記 ProteinA親和力較低,可適當(dāng)降低其稀釋度(也可先嘗試HRP-抗小鼠lgG二抗); WB一抗若為小鼠 lgM/lgA亞型,則避免選擇HRP- ProteinA,因其不結(jié)合。 |
兔來源 | HRP-抗兔IgG | ||
兔來源 | 小鼠來源 | HRP-抗小鼠IgG | |
兔來源 | HRP-protein A或HRP-抗兔IgG輕鏈特異性抗體 | HRP-Protein A可以有效降低重鏈信號以及消減輕鏈信號的影響,背景干凈,適用于檢測目的蛋白大小除45-55kDa之外的所有目的蛋白,而目的蛋白大小在45-55kDa之間時,推薦使用HRP-標(biāo)記抗兔lgG輕鏈特異性二抗。 |
原創(chuàng)作者:武漢菲恩生物科技有限公司
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